Western Blot雖是實驗室zui常用的蛋白分析技術，但是由于它步驟繁瑣、操作流程長、影響因素多，所以導致在實驗過程中會遇到各式各樣的問題，那么你知道WB實驗常見問題有哪些呢？該如何解決呢？讓我們一起來看看吧！

一、目標條帶沒有信號

原因分析：

1.樣品中可能含有蛋白酶，使蛋白樣品分解成小分子。

2.目標蛋白濃度過低（低于檢測下線）。

3.轉膜時間太短導致目標蛋白沒有充分轉移到膜上，或者轉膜時間過長導致樣品轉穿。

4.一抗的特異性不佳，導致一抗無法識別目標蛋白。

解決方法：

1.添加蛋白酶抑制劑。

2.加大上樣量或提高目標蛋白濃度。

3.控制轉膜時間并選擇適合的轉印膜。

4.選用高品質抗體。

二、圖片背景過高，難以分辨條帶

原因分析：

1.一抗?jié)舛忍?，導致抗體非特異性結合。

2.洗膜的時間和次數不夠，導致其他蛋白沒有清洗干凈

3.封閉物用量不足。

4.封閉物使用不當。

解決方法：

1.降低一抗?jié)舛取?/p>

2.提高洗脫時間和頻率。

3.提高封閉物濃度，孵育時保證封閉液wan全浸沒轉印膜。

4.檢測生物素標記的蛋白時不可用脫脂奶粉封閉。

三、 膜上出現黑點和黑斑

原因分析：

1.抗體與封閉試劑反應。

2.HRP偶聯二 抗中有聚集體。

解決方法：

1.使用前過濾封閉試劑。

2.過濾二抗試劑，去除聚集體。

四、出現非特異性條帶

原因分析：

1.一抗非特異性與蛋白結合，此種情況大多數情況是因為一抗特異性不好。

2.目的蛋白有多個修飾位點，有些一抗還能結合其他蛋白的結合位點。

3.蛋白樣品降解，蛋白酶將目標蛋白分解成若千個蛋白，而這些蛋白同樣可以被一抗識別。

解決方法：

1.更換一抗。

2.更換一抗品種。

3.添加蛋白酶抑制劑。

五、條帶粘連

條帶粘連是不同孔目標條帶連在一起，中間無間隔，如圖所示。出現該現象的原因可能是上樣量太多，或者是制膠問題，分離膠和濃縮膠之間有間隙，樣品竄孔?？赏ㄟ^減少上樣量和提高配膠質量來避免該問題。其次是樣品彌散（比如電泳長時間停止樣品彌散）

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